Список Литературы
Айзенштадт Т.Б. Цитология оогенеза. — М.: Наука, 1984. — 247 с.1.
Акимова Н.В. Гаметогенез и половая цикличность сибирского осет2. ра в естественных и экспериментальных условиях // В кн.: Особенности репродуктивных циклов у рыб в водоёмах разных широт. — М.: Наука, 1985. — С. 111– 122.
Акимова Н.В. Нарушения в развитии половых клеток у сибирского осет3. ра при тепловодном выращивании // Тез. докл. IV Всес. конфер. по раннему онтогенезу рыб. — М., 1988. — С. 4–6.
Акимова Н.В. Энергетический обмен и репродукция сибирского осет4. ра // Мат-лы VIII научн. конфер. по экологич. физиол. и биохимии рыб. — Петрозаводск, 1992. — С. 6–7.
Акимова Н.В., Рубан Г.И. Систематизация нарушений воспроизводства 5. осетровых (Acipenseridae) при антропогенном воздействии // Вопр. ихтиологии. — 1996. — Т. 36. — № 1. — С. 65–80.
Акимова Н.В., Рубан Г.И. Аномалии в развитии и функциониро6. вании воспроизводительной системы сибирского осетра Acipenser baerii Brandt (Acipenseridae) реки Енисей // Изв. РАН. Сер. биол. — 2009. — № 5. — С. 627– 631.
Александрова Я.Н. Роль митохондрий в биогенезе зародышевых детер7. минантов. Автореф. дис. ... канд. биол. наук. — Владивосток, 2005. — 23с.
Алов И.А., Брауде А.И., Аспиз М.Е. Основы функциональной морфологии 8. клетки. — М.: Медицина, 1969. — 402 с.
Андреев В.Л., Решетников Ю.С. Исследование внутривидовой и морфоло9. гической изменчивости сига Coregonus lavaretus (L.) методами многомерного статистического анализа // Вопр. ихтиологии, 1977. — Т. 17. Вып. 5. — С. 862– 878.
Андрияшева М.А. Генетические аспекты разведения сиговых рыб. — 10. СПб.: ГосНИОРХ, 2011. — 639 с.
Андрияшева М.А., Черняева Е.В. Последствия инбридинга у пеляди // 11. Сб. научн.трудов ГосНИОРХ, 1985. — Вып. 228. — С. 23–33.
Анпилова В.И. Биология и разведение баунтовского сига // Сб. научн. тр. 12. ГосНИОРХ. — Л.: ГосНИОРХ, 1967. — Т. 63. — С. 74–124.
Архипчук В.В., Романенко В.Д., Макарова Т.А. Закономерности изменения 13. ядрышкообразующей функции в онтогенезе карповых рыб // Успехи современной биологии. — 1993. — Т. 113. — Вып. 5. — С. 626–636.
Ахмадиева А.В. Морфофункциональное исследование стволовых клеток 14. беспозвоночных животных с репродуктивной стратегией, включающей бесполое размножение. Автореф. … канд. биол. наук. Владивосток: Институт биологии моря ДВО РАН. — 2008. — 23 с.
Ахундов М.М., Федоров К.Е. Ранний гамето- и гонадогенез осетровых рыб. 15. О критериях сравнительной оценки развития половых желез молоди на примере русского осетра Acipenser gueldenstaedti // Вопр. ихтиологии. — 1990. — Т. 30. Вып. 56. — С. 963–973.
84
Ахундов М.М., Касимов Р.Ю., Федоров К.Е., Ахундова Г.Г. Экологическая плас16. тичность процессов закладки и сексуализации гонад у молоди осетровых рыб // Мат-лы VIII научн. конфер. по экологич. физиол. и биохимии рыб. — Петрозаводск, 1992. — С. 14–15.
Балдина С.Н. Внутривидовая генетическая дифференциация и филогеог17. рафия сигов (р. Coregonus) Сибири. Автореф. дисс. … канд. биол. наук. — М.: Институт Общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН, 2010. — 23 с.
Балдина С.Н., Гордон Н.Ю., Политов Д.В. Генетическая дифференци18. ация муксуна Coregonus muksun (Pallas) и родственных видов сиговых рыб (Coregonidae, Salmoniformes) Сибири по мтДНК // Генетика, 2008. — Т. 44. — № 7. — С. 896– 905.
Белоусов И.Ю. Оогенез и особенности созревания яйцеклеток чира 19. Coregonus nasus (Pallas) в естественном ареале и в условиях аквакультуры за его пределами. Автореф. дисс. ... канд. биол. наук. — Л., 1991. — 17 с.
Беляев В.А., Федоров К.Е., Сакун О.Ф. Оогенез и особенности функции по20. ловых желез у рыб эпинерестического комплекса течения Куросио. — СПб.: СПб ГУ, 2004. — 124 с.
Берекеля Л.А., Пономарев М.Б., Микрюков А.А. и др. Молекулярные ме21. ханизмы детерминации клеток зародышевого пути // Молекулярная биология, 2005. — Т. 39. — № 4. — С. 664–677.
Беспоместных Г.Н. Формирование систем органов у сиговых рыб 22. (genus Coregonus) под влиянием природных и антропогенных факторов разной интенсивности. Дисс. … канд. биол. наук. — Тюмень: ТюмГУ, 2007. — 177 с.
Богданов В.Д. Эмбриональное развитие обского чира в естественных ус23. ловиях // Морфология, структура популяций и проблемы рац. исп. лососевидных рыб. — Л., 1983а. — С. 16–17.
Богданов В.Д. Видовые особенности личинок некоторых сиговых 24. (Coregonidae) рыб на этапе вылупления // Вопр. ихтиологии, 1983 б. — Т. 23. — Вып. 3. — С. 449–459.
Богданов В.Д. Изучение динамики численности и распределения личинок си25. говых рыб реки Северной Сосьвы. — Свердловск: ИЭРиЖ УрО АН СССР, 1987. — 59 с.
Богданов В.Д. Экология молоди и воспроизводство сиговых рыб нижней 26. Оби. Автореф. дисс. … д- ра. биол. наук. — М., 1997. — 38 с.
Богданов В.Д. Морфологические особенности развития и определитель 27. личинок сиговых рыб р. Обь. — Екатеринбург: ИЭРиЖ УрО РАН, 1998. — 53 с.
Богданов В.Д. Эмбриональное развитие сиговых рыб на естественных не28. рестилищах в уральских притоках нижней Оби // Научн. вестник. Экология растений и животных севера Западной Сибири, 2006. — Вып. 6 (2) (43). — С. 3–17.
Богданов В.Д., Богданова Е.Н., Госькова О.А. и др. Рыбы бассейна Нижней 29. Оби // Экология рыб Обь-Иртышского бассейна. — М.: Т-во научных изданий КМК, 2006. — С. 252–325.
Богданов В.Д. Выживание икры сиговых рыб на нерестилищах в ураль30. ских притоках нижней Оби // Научн. вестн. Ямало-Ненецк. авт. окр., 2007. — Вып. 2 (46). — С. 42–49.
Богданова В.А. Гаметогенез у гиногенетических и гибридных форм сиго31. вых рыб. Автореф. дисс. … канд. биол. наук. — СПб.: СПбГУ, 1991. — 17 с.
Бодали Р.А., Вуоринен Д.А., Решетников Ю.С, Рист Д.Д. Генетические связи пяти 32. видов сиговых рыб Сибири // Вопр. ихтиологии, 1994. — Т. 34. — №. 2. — С. 195—203.
Божкова В.П., Карпова Е.Г., Цыганкова Н. В. Происхождение первичных 33. половых клеток у вьюна // Онтогенез, 1993. — Т. 24. — №5. — С. 405–408.
Бондаренко О.М. Формирование генеративной системы и ее модифика34. ция экологическими факторами в раннем онтогенезе сиговых и осетровых рыб. Дисс. … канд. биол. наук. — Тюмень: ТюмГУ, 2003. — 189 с.
85
Боровиков В.П. Statistica. Искусство анализа данных на компьютере. — 35. СПб.: Питер, 2003. — 344 с.
Боровикова Е.А., Махров А.А. Систематическое положение и происхожде36. ние сигов (Coregonus, Coregonidae, Osteichthyes) Европы. Генетический подход // Успехи соврем. — Биологии, 2009. — Т. 129. — № 1. С. 58 –66.
Бродский В.Я. Трофика клетки. — М.: Наука, 1966. — 356 с. 37.
Бродский В.Я., Урываева И.В. Клеточная полиплоидия. Пролиферация и 38. дифференцировка. — М.: Наука, 1981. — 260 с.
Бунур Л. Линия половых клеток у бесхвостых амфибий // Происхожде39. ние и развитие половых клеток в онтогенезе позвоночных и некоторых групп беспозвоночных. — Л.: Медицина, 1968. — С. 186–211.
Васильев В.П. Эволюционная кариология рыб. — М.: Наука, 1985. — 301 с.40.
Венглинский Д.Л. Экологические черты адаптации сиговых к условиям сущес41. твования в водоемах Субарктики // Эколого-физиологические адаптации животных и человека к условиям Севера. –Якутск: Якутск.фил. СО АН СССР, 1977. — С. 96–121.
Вивьен Ж. Происхождение половых клеток у рыб // Происхождение и 42. развитие половых клеток в онтогенезе позвоночных и некоторых групп беспозвоночных. — Л.: Медицина, 1968. — С. 255–273.
Вотинов Н.П. Муксун как объект искусственного разведения и акклима43. тизации // Тр. Обь-Тазовск. отд. ВНИОРХ. — Нов. сер., 1963. – Т. 3. — С. 115–137.
Вторушин М.Н. Экологическая пластичность морфо- и гаметогенеза рыб 44. под влиянием антропогенных факторов различной природы. Дисс. … канд. биол. наук. — Тюмень: ТюмГУ, 2003. — 217 с.
Гарлов П.Е., Федоров К.Е., Кузнецов Ю.К. Искусственное воспроизводство 45. рыб. Управление размножением: Учебное пособие. — СПб.: Изд-во «Лань», 2014. — 256 с.
Гербилъский Н.Л. Возрастные и сезонные изменения в овоцитах зеркаль46. ного карпа // Архив анат., гистол. и эмбриол., 1939. — Т. 21. — № 2. — С. 241–276.
Гоголева Т.Е. Период раннего гаметогенеза у рипуса при выращивании в 47. садках // Сб. научн. тр. ГосНИОРХ. — Л.: ГосНИОРХ, 1983. — № 195. — С. 134–140.
Головкова Г.А. Эмбриональное развитие сига-пыжьяна 48. Сoregonus lavaretus pidschian (Gmel.) в условиях ЦЭС ГосНИОРХ «Ропша» // Сб. научн. тр. ГосНИОРХ. — Л.: ГосНИОРХ, 1986. — Вып. 247. — С. 44–54.
Гривенников И.А. Эмбриональные стволовые клетки и проблема направ49. ленной дифференцировки // Успехи биол. химии, 2008. — Т. 48. — С. 181–220.
Данилъченко О.П. Чувствительность эмбрионов рыб к действию токси50. ческих веществ // Вопр. ихтиологии, 1977. — Т. 17. — Вып. 3. — С. 518–527.
Данилъченко О.П., Строганов Н.С. Оценка токсичности веществ, спускае51. мых в водоемы, для раннего онтогенеза рыб // Вопр. ихтиологии, 1975. — Т. 15. — Вып. 2. — С. 346–355.
Детлаф Т.А. Температурно-временные закономерности развития пойкило52. термных животных. — М.: Наука, 2001. — 211 с.
Детлаф Т.А., Детлаф А.А. О безразмерных характеристиках продолжитель53. ности развития в эмбриологии // Докл. АН СССР, 1960. — Т. 134. — С. 199–202.
Дормидонтов А.С. Особенности гаметогенеза сигов в северных водоемах 54. Якутии // Зоол. исслед. Сибири и Дальнего Востока. — Владивосток, 1974. — С. 169–173.
Емельянова Н.Г. Ультраструктура превителлогенных ооцитов форели 55. Oncorhynchus mykiss // Вопр. ихтиологии, 1994. — Т. 34. — № 3. — С. 420–423.
Ефремова Е.В., Селюков А.Г., Шуман Л.А. Особенности дифференциров56. ки пола и формирование половых клеток в раннем онтогенезе муксуна Coregonus muksun (Pallas) // Вестник ТюмГУ. — Тюмень, 2011а. — Медико-биологические науки. № 6. — С. 46–55.
86
Ефремова Е.В., Моисеенко Т.И., Селюков А.Г., Гоголева С.Ю. Морфофункци57. ональные нарушения у эмбрионов сиговых рыб в условиях фенольной интоксикации // Тюмень, 2011 б. — Вестник ТюмГУ. — №12. — С. 38–46.
Ефремова Е.В. Ранний гаметогенез сиговых рыб р. 58. Coregonus в условиях искусственного содержания. Дисс. … канд. биол.наук. — М: ВНИРО, 2013. — 178 с.
Жукинский В.Н. Влияние абиотических факторов на разнокачественность 59. и жизнеспособность рыб в раннем онтогенезе. — М.: Агропромиздат, 1986. — 248 с.
Захарова Н.И. Дифференцировка пола у радужной форели при выращива60. нии в системе с рециркуляцией воды // Морфология, структура популяций и проблемы рационального использования лососевидных рыб. — Л.: Наука, 1983 а. — С. 70-71.
Захарова Н.И. Развитие половых желез радужной форели 61. Salmo gairdneri Rich. (Salmonidae) в пострадиационный период. 1. Облучение личинок в возрасте 24 сут после вылупления // Вопр. ихтиологии, 1983 б. — Т. 23. — Вып. 6. — С. 951– 959.
Захарова Н.И. Морфофункциональные закономерности раннего гаметоге62. неза радужной форели (Salmo gairdneri Rich.) при различном температурном режиме и рентгеновском облучении. Автореф. дисс. … канд. биол. наук. — Л., 1984. — 17 с.
Захарова Н.И. Дифференцировка пола байкальского омуля при различных 63. температурных режимах выращивания // Тез. докл. IV Всес. совещ. по биол. и биотехн. развед. сиговых рыб. — Л., 1990. — С. 47–48.
Захарова Н.И. Дифференцировка пола у байкальского омуля при различ64. ных температурных режимах выращивания // Труды Биол. НИИ СПбГУ, 1997. — Вып. 44. — С. 65–73.
Захарова Н.И., Зайцева А.Н. Развитие половых желез в раннем онтоге65. незе белого байкальского хариуса // Известия ИрГУ. Сер. «Биология. Экология», 2009. — Т. 2. — № 1. — С. 66–69.
Захарова Н.И., Чмилевский Д.А. Влияние пониженной температуры на 66. развитие гонад радужной форели (Salmo gairdneri). Воздействие на рыб в возрасте 13 сут после вылупления // Изв. ГосНИОРХ, 1984. — Вып. 203. — С. 40–47.
Захарова Н.И., Чмилевский Д.А. Влияние пониженной температуры на 67. развитие гонад радужной форели (Salmo gairdneri). Воздействие на рыб в возрасте 5,5 мес после вылупления // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ, 1985. — Вып. 229. — С. 95–104.
Зацепина О.В. Современные представления о свойствах и функциях яд68. рышка: ядрышко как мишень стрессовых воздействий на клетки // Цитология, 2009. — Т. 49. — № 9. — С. 748–749.
Зеленков В.М. Развитие половых желез и становление индивидуальной 69. плодовитости у беломорской сельди Clupea harengus marisalbi Berg и обыкновенного окуня Perca fluviatilis L.: Автореф. дисс. … канд. биол. наук. — М.: МГУ, 1982. — 24 с.
Зеленков В.М. Ранний гаметогенез и дифференцировка пола у беломор70. ской сельди Clupea pallasi marisalbi // Вопр. ихтиологии, 1990. — Т. 30. — № 6. — С. 957–962.
Зеленников О.В. Сравнительный анализ состояния яичников у молоди 71. тихоокеанских лососей в связи с проблемой становления моноциклии // Вопр. ихтиологии, 2003. — Т. 43. — № 4. — С. 490–498.
Зубина Л.В. Особенности оогенеза у экологически различных видов бай72. кальских коттоидных рыб (Cottoidei) // Вопр. ихтиологии, 1996. — Т. 36. — № 5. — С. 638–646.
Иванова В.Ф. Дискуссионные аспекты проблемы амитоза // Арх. анат., 73. гистол. и эмбриол., 1982. — Т. LХХХIII. — № 18. — С. 81–87.
Иванова В.Ф. Многоядерные клетки (образование, строение, биологическое 74. значение) // Арх. анат., гистол. и эмбриол., 1984. — Т. LXXXVII. — № 12. — С. 80–86.
87
Ивантер Э.В., Коросов А.В. Введение в количественную биологию: Учеб75. ное пособие. — Петрозаводск: ПетрГУ, 2003. — 304 с.
Игнатьева Г.М. Ранний эмбриогенез рыб и амфибий. — М.: Наука, 1979. — 76. 175 с.
Исаева В.В. Исследования по биологии развития в Институте биологии 77. моря ДВО РАН // Онтогенез, 2008. — Т. 39. — № 5. — С. 390–398.
Исаева В.В., Шукалюк А.И., Кизилова Е.А. Выявление стволовых клеток 78. в колониальном интерне корнеголовых ракообразных Peltogasterella gracilis и Sacculina polygenea на паразитической стадии жизненного цикла // Цитология, 2003. — Т. 45. — № 8. — С. 758–763.
Исаева В.В., Шукалюк А.И., Ахмадиева А.В. Стволовые клетки беспозво79. ночных животных с репродуктивной стратегией, включающей бесполое размножение // Биология моря, 2007. — Т. 33. — № 1. — С. 3–10.
Исаева В.В., Ахмадиева А.В., Александрова Я.Н., Шукалюк А.И. Морфо80. функциональная организация стволовых резервных клеток, обеспечивающих бесполое и половое размножение беспозвоночных животных // Онтогенез, 2009. — Т. 40. — № 2. — С. 83–96.
Исаева В.В., Реунов А.А. Половая плазма и детерминация линии половых 81. клеток: роль митохондрий // Биология моря, 2001. — Т. 27. — № 4. — С. 231–237.
Исаков П.В., Селюков А.Г. Сиговые рыбы в экосистеме Обской губы. — Тю82. мень: ТюмГУ, 2010. — 184 с.
Каменева Т.О. Изучение транскрипционной активности ядрышек ооцитов 83. стерляди методами авторадиографии и серебрения // Цитология, 1991. — Т. 33. — № 8. — С. 3–9.
Каролинская Х.М. Амитотическое деление и его место в размножении кле84. ток // Успехи соврем. биол., 1952. — Т. XXXIII. — Вып. 2(5). — С. 287–304.
Кауфман З.С. Эмбриология рыб. — М.: Наука, 1990. — 271 с.85.
Кацнельсон З.С., Кнорре А.Г. Проблема амитоза и пути ее разработки // 86. Бюллетень МОИП, 1962. — Вып. 6. — С. 143–144.
Кленов М.С., Столяренко А.Д., Рязанский С.С. и др. Роль коротких РНК в ре87. гуляции экспрессии генов и мобильных элементов в герминативных клетках // Онтогенез, 2007. — Т. 38. — № 3. — С. 213–227.
Клишов А.Л. Гистогенез и регенерация тканей. — Л.: Медицина, 1984. — 232 с.88.
Кнорре А.Г. Взаимоотношение митоза и амитоза в индивидуальном и исто89. рическом развитии организмов // Цитология, 1959. — Т. 5. — Вып. 1. — С. 494–509.
Ковалева В.Ю., Абрамов С.А, Дупал Т.А., Ефимов В.М., Литвинов Ю.Н. Анализ 90. соответствия и комбинирование молекулярно-генетических и морфологических данных в зоологической систематике // Изв. РАН. — Сер. биологич., 2012. — № 4. — С. 404–414.
Кожухарь В.Г. Первичные половые клетки млекопитающих и человека. 91. Происхождение, идентификация, миграция // Цитология, 2011а. – Т. 53. — № 3. — С. 211–220.
Кожухарь В.Г. Судьба гоноцитов млекопитающих: оогенез или сперматоге92. нез // Цитология, 2011 б. — Т. 53. — № 10. — С. 778–787.
Кондратьев А.К. Функциональная морфология ооцитов периода превител93. логенеза у сибирской стерляди (Acipenser ruthenus marsiglii Brandt) в разные периоды ее годового цикла // Вопр. ихтиологии, 1977. — Т. 17. — Вып. 5. — С. 912–921.
Костров Б.Л., Шеханова И.А. Влияние хлорида ртути и фосфора-32 на дыха94. ние эмбрионов вьюна Misgurnus fossilis (L.) // Вопр. ихтиологии. — 1981. — Т. 21. – Вып. 3. — С. 568–570.
Кошелева В.В., Мигаловский И.П. Развитие воспроизводительной и кровет95. ворной систем у сига-пыжьяна на ранних стадиях онтогенеза // Тез. докл. «IV Всес. конф. по раннему онтогенезу рыб». — Мурманск, 1988. — Ч. I. — С. 154–156.
88
Крупкин В.З. Биология и биотехника разведения муксуна 96. Coregonus muksun (Pallas) в водоемах северо-запада. Автореф. дис. … канд. биол. наук. — Л.: ГосНИОРХ, 1975. — 21с.
Кузнецов В.В., Кузнецова Е.Н., Ключарева Н.Г. и др. Экология размноже97. ния сиговых рыб Coregonidae в Обской губе Карского моря. — М.: Изд-во ВНИРО, 2011. — 136 с.
Кузнецов Ю.К. О морфологии ооцитов протоплазматического роста у 98. рыб различным темпом полового созревания на примере представителей вида Osmerus eperlanus (L.) // Экологическая пластичность половых циклов и размножения рыб. — Л.: Ленингр. ун-т, 1975. — С. 50–65.
Кузнецов Ю.К. Исследование функции яичников в связи с явлением карли99. ковости у рыб и круглоротых на примере представителей родов Osmerus Lacepede и Lampetra Gray. Автореф. дис. … канд. биол. наук. — Л: ЛГУ, 1986. — 22 с.
Кузьмин А.Н. Эмбриональное развитие пеляди // Тр. Обь-Тазовск. отд. Гос100. НИОРХ. Нов. сер. — Тюмень, 1963. — Т. 3. — С. 148–164.
Кузьмин А.Н. Некоторые закономерности развития воспроизводительной 101. системы и периодизация гаметогенеза у сиговых (ихтиофауны СССР, включая Сибирь) // Изв. ГосНИОРХ, 1975. — Т. 104. — С. 17–27.
Лаврова Т. В., Чмилевский Д.А. Влияние повышенной температуры на ооге102. нез тиляпии Oreochromis mossambicus (Peters) // Изв. ГосНИОРХ, 1987. — Вып. 259. — С. 134–143.
Лапицкий И.И. Оогенез и годичный цикл яичников у сига-лудоги 103. Coregonus lavaretus ludoga Pol. // Тр. лаб. основ рыбоводства. — Л., 1949. — Т. 2. С. 37–64.
Лебедева О.А. Эколого-морфологические особенности развития сиговых 104. рыб. Автореф. дис. … канд. биол. наук. — М., 1974. — 28 с.
Лебедева О.А. Сравнительная характеристика раннего онтогенеза сиговых 105. рыб // Природа и хозяйственное использование озёр Северо-Запада Русской равнины. — Л.: ЛПТИ, 1976. — С. 30–57.
Лебедева О.А. Экологическая толерантность сиговых рыб на ранних эта106. пах развития // Тез. докл. II Всес. совещ. по биологии и биотехнике развед. сиговых рыб. — Петрозаводск, 1981. — С. 13–16.
Лебедева О.А. Развитие икры и личинок пеляди // Сб. научн. тр. ГосНИОРХ, 107. 1985. — Т. 236. — С. 74–85.
Лебедева О.А. Развитие икры и личинок // Пелядь. Систематика, морфоло108. гия, экология, продуктивность. — М.: Наука, 1989. — С. 211–228.
Лебедева О.А., Завьялова М.Н. Морфофизиологические изменения в эмбри109. огенезе сиговых рыб при заводском воспроизводстве // Тез. докл. III Всес. совещ. по биол. и биотехн. развед. сиговых рыб. — Тюмень, 1985. — С. 8–11.
Леманова Н.А. Исследование диагностических признаков, биологии и гаме110. тогенеза реципрокных гибридов рипуса Coregonus albula infrsp. ladogensis и сига-лудоги Coregonus lavaretus ludoga. Автореф. дис. … канд. биол. наук. — Л., 1965. — 20 с.
Лилли Р.Д. Патогистологическая техника и практическая гистохимия. — 111. М.: Мир, 1969. — 645 с.
Макеева А.П., Емельянова Н.Г. Периодизация оогенеза у карповых рыб // 112. Вопр. ихтиологии, 1989. — Т. 29. — Вып. 6. — С. 931–943.
Малышев В.И. Эмбриональное развитие тугуна // Изв. ГосНИОРХ, 1974. — 113. Т. 92. — С. 98–101.
Матишов Г.Г., Журавлева Н.Г., Оттесен О., Кириллова Е.Е. Локализация пер114. вичных половых клеток личинок трески Баренцева моря // Докл. РАН, 2010. — Т. 430. — № 6. — С. 841–843.
Матковский А.К. Основные закономерности динамики численности мук115. суна Coregonus muksun р. Обь и их использование для управления его запасом // Вопр. рыболовства, 2006. — Т. 7. — № 3(27). — С. 505–521.
89
Матковский А.К. Деградационные процессы в популяции муксуна реки Обь 116. и необходимые меры по восстановлению его численности // Мат-лы 7 Межд. научно-производств. совещ. по биологии и биотехн. развед. сиговых рыб. — Тюмень: Госрыбцентр, 2010. — С. 176–181.
Межнин Ф.И. Развитие половых желез в раннем онтогенезе обыкновенно117. го окуня Рerca fluviatilis L. // Вопр. ихтиологии, 1978. — Т. 18. — Вып. 1(108). — С. 84–100.
Мешков М.М., Лебедева О.А. Разнокачественность раннего онтогенеза ло118. сосевидных рыб // Лососевидные рыбы. — Л.: Наука, 1980. — С. 30–40.
Мигаловский И.П. Развитие икры в ранний период гаметогенеза у зароды119. шей и личинок севрюги в условиях радиоактивного загрязнения воды // Тр. ПИНРО, 1971. — Вып. 29. — С. 32–44.
Микодина Е.В., Седова М.А., Чмилевский Д.А. и др. Гистология для ихтиоло120. гов: Опыт и советы. — М.: ВНИРО, 2009. — 112 с.
Михайлов В.П. Амитоз, эндомитоз // Введение в цитологию. — Л.: Медици121. на, 1968. — С. 163–171.
Моисеева Е.Б. Развитие половых желез бычка-кругляка 122. Neogobius melanostomus (Pallas) (Gobiidae) в эмбриональный период // Вопр. ихтиологии, 1983. — Т. 23. — № 5. — С. 786–795.
Моисеева Е.Б., Федоров С.И., Парфенова Н.А. О нарушениях строения по123. ловых желез у самок осетровых (Acipenseridae) Азовского моря // Вопр. ихтиологии, 1997. — Т. 37. — № 5. — С. 660–666.
Москаленко Б.К. Биологические основы эксплуатации и воспроизводс124. тва сиговых рыб Обского бассейна // Тр. Обь-Тазовск. отд. ВНИОРХ. — Нов.серия, 1958. — Т. I. — 251 с.
125. Мостовская В.А., Полякова Л.А. Первичные половые клетки у личинок пеляди гиногенетического происхождения // Генетич. методы селекции (ред. М.А. Андрияшева). — Л., 1986. — С. 16–20.
Оловников А.М. Для чего мигрируют по эмбриону первичные половые 126. клетки и какое это имеет значение для биологической эволюции? // Биохимия, 2013. — Т. 7. — Вып. 10. — С. 1514 — 1526.
Персов Г.М. Возраст и рост организма и состояние гонад у стерляди в 127. период до дифференцировки пола // Биол. основы рыбн. хоз-ва. – Томск: Изд-во Томского ун-та, 1959. — С. 56–63.
Персов Г.М. Процесс анатомической и цитологической дифференцировки 128. пола у лососевых рыб рода Salmo // Учен. зап. ЛГУ. — Сер. биол. наук, 1962. — Вып. 48. — № 311. — С. 74–92.
Персов Г.М. Ранний период гаметогенеза у проходных лососей // Тр. ММБИ, 129. 1966. — Вып. 12(16). — С. 7–44.
Персов Г.М. Дифференцировка пола у рыб. — Л.: ЛГУ, 1975. — 148 с.130.
Пирожников П.Л., Дрягин П.А., Покровский В.В. О таксономическом ран131. ге и филогении сиговых (Coregonidae, Pisces) // Изв. ГосНИОРХ, 1975. — Т. 104. — С. 5–17.
Петухов С.А., Сторожук Н.Г. О токсическом действии ртути на личинок кеты 132. Oncorhynchus keta (Walb.) и кижуча O. kisutch (Walb.) // Вопр. ихтиологии, 1980. — Т. 20. — Вып. 6 (125). — С. 927–930.
Политов Д.В., Балдина С.Н., Гордон Н.Ю. Филогенетика и филогеография 133. сиговых — сравнение морфологического и генетического подходов // Мат-лы 7-го Межд. науч.-произв. совещания по биологии, биотехн. развед. и сост. запасов сиговых рыб. — Тюмень: ФГУП Госрыбцентр, 2010. — С. 37–41.
Пресняков А.В., Микодина Е.В., Макоедов А.Н. Опыт оценки здоровья си134. говых рыб Тазовской и Обской губ двумя фенетическими методами // Биология, биотехника разведения и состояние запасов сиговых рыб. Мат-лы Седьмого межд.
90
науч.-производ. совещания (Тюмень, 16-18 февраля 2010 года). — Тюмень: Госрыбцентр, 2010. — С. 140–144.
Пузаченко Ю.Г. Математические методы в экологических и географичес135. ких исследованиях. — М.: ИЦ «Академия», 2004. — 416 с.
Райцина С.С. Происхождение и развитие половых клеток // Современные 136. проблемы сперматогенеза. — М.: Наука, 1982. — С. 5–24.
Ревуцкая П.С. О чередовании амитотических и митотических процессов // 137. Журн. общ. биол., 1952. — Т. 13. — № 1. — С. 28–49.
Реунов А.А., Незнанова С.Ю., Александрова Я.Н., Исаева В.В. Ультраструк138. турное исследование взаимодействия герминативных гранул и митохондрий у Apostichopus japonicus (Echinodermata: Holothuroidea) и Pleuronectes asper (Teleostei: Pleuronectidae) // Биология моря, 2004. — Т. 30. — № 3. — С. 244–246.
Реунов А.А., Юрченко О.В., Александрова Я.Н., Исаева В.В. Аутолиз субстан139. ции зародышевой плазмы в сперматогониях морского ежа при воздействии кадмия // Докл. РАН, 2005. — Т. 401. — № 2. — С. 282–285.
Решетников Ю.С. О систематическом положении сиговых рыб // Зоол. 140. журн., 1975. — Т. 54. — Вып. 11. — С. 1656–1671.
Решетников Ю.С. Экология и систематика сиговых рыб. — М.: Наука, 141. 1980. — 301 с.
Решетников Ю.С. О центрах возникновения и центрах расселения в связи 142. с распределением числа видов по ареалу на примере сиговых рыб // Актуальные пробл. соврем. ихтиологии (к 100-летию Г.В.Никольского). — М.: Т-во научн. изд. КМК, 2010. — С. 62–87.
Решетников Ю.С. Сиговые рыбы в свете современной систематики // Мат-143. лы 8-го Межд. науч.-произв.совещ. по биологии, биотехнике развед. и сост. запасов сиговых рыб. — Тюмень: ФГУП Госрыбцентр, 2013. — С. 182–187.
Решетников Ю.С., Попова В.А., Стерлигова О.П. и др. Изменение структуры 144. рыбного населения эвтрофируемого водоема. — М.: Наука, 1982. — 248 с.
Решетников Ю.С., Богданов В.Д. Особенности воспроизводства сиговых 145. рыб // Вопр. ихтиологии, 2011. — Т. 51. — № 4. — С. 502–525.
Романов А.А., Шевелева Н.Н., Алтуфьев Ю.В. Нарушение гонадо- и гаметоге146. неза осетровых Каспийского моря // Физиол.-биохимич. статус волго-каспийских осетровых в норме и при расслоении мышечной ткани (кумулятивный политоксикоз). — Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод АН СССР, 1990. — С. 92–100.
Ромейс Б. Микроскопическая техника. — М.:Иностр. литература, 1953. — 147. 718 с.
Ротт Н.Н. Клеточные циклы в раннем эмбриогенезе животных. — М.: На148. ука, 1987. — 207 с.
Рубан Г.И. Сибирский осетр 149. Acipenser baerii Brandt (структура вида и экология). — М.: ГЕОС, 1999. — 236 с.
Руднева И.И., Чесалина Т.Л., Кузьминова Н.К. Ответные реакции черномор150. ской кефали на загрязнение мазутом // Экология, 2000. — № 4. — С. 304–306.
Руднева И.И., Залевская И.Н., Шайда В.Г. Действие полихлорированных би151. фенилов на личинок атерины Atherina hepsetus // Вопр. ихтиологии, 2003. — Т. 43. — № 2. — С. 272–276.
Руднева И.И., Залевская И.Н. Личинки атерины (152. Atherina hepsetus L.) как биоиндикаторы загрязнения прибрежных акваторий Черного моря // Экология, 2004. — № 2. — С. 107–112.
Рязанцева М.В., Сакун О.Ф. Половые клетки и развитие гонад карпа 153. Cyprinus carpio L. в раннем онтогенезе // Вопр. ихтиологии, 1980. — Т. 20. — Вып. 3. — С. 524– 33.
Сакун О.Ф. Амитоз половых клеток у рыб и условия его возникновения // 154. Проблемы соврем. эмбриол. — М.: МГУ, 1964. — С. 295–297.
91
Селье Г. Очерки об адаптационном синдроме. — М.: Медгиз, 1960. — 155. 253 с.
Селюков А.Г. Ранний гаметогенез пеляди 156. Coregonus peled (Gmelin) // Вестник Ленингр. ун-та. — Биология, 1985. — № 17. — С. 26–32.
Селюков А.Г. Оогенез и овариальные циклы озерной пеляди 157. Coregonus peled (Gmelin) в естественном ареале и в условиях Ленинградской области. Дисс. … канд. биол. наук. — Л: ЛГУ, 1987. — 237 с.
Селюков А.Г. Гаметогенез и половые циклы // Пелядь: Систематика, мор158. фология, экология, продуктивность (ред. Ю.С. Решетников). — М.: Наука, 1989. — С. 167–188.
Селюков А.Г. Морфофункциональный статус рыб Обь-Иртышского бассей159. на в современных условиях. — Тюмень: ТюмГУ. — 2007. — 184 с.
Селюков А.Г. Морфофункциональные изменения рыб бассейна Средней и 160. Нижней Оби в условиях возрастающего антропогенного влияния // Вопр. ихтиологии. — 2012. — Т. 52. — № 5. — С. 581–600.
Селюков А.Г., Беспоместных Г.Н., Селюкова Г.П. Экологическая пластич161. ность морфологических признаков в раннем онтогенезе сиговых рыб (Coregonidae)
Обь-Иртышского бассейна // Вестник ТюмГУ. — 2005. — № 5. — С. 163–173.
Селюков А.Г., Бондаренко О.М., Вторушин М.Н., Беспоместных Г.Н. Коррекция 162. сверхслабыми магнитными полями генеративной функции у сигов-планктофагов в постэмбриональном онтогенезе // Вестник ТюмГУ. — 2003. — № 2. — С. 53– 61.
Селюков А.Г., Елькин В.П., Вторушин М.Н., Бондаренко О.М. Использование 163. технологий нового поколения для повышения морфобиологического статуса пеляди за пределами естественного ареала // Вестник ТюмГУ. — 2000а. — № 3. — С. 183–193.
Селюков А.Г., Вторушин М.Н., Бондаренко О.М. Морфофункциональные 164. трансформации в раннем онтогенезе иртышской стерляди под влиянием слабых магнитных полей // Вестник ТюмГУ. — 2000 б. — № 3. — С. 193–205.
Селюков А.Г., Ефремова Е.В., Беспоместных Г.Н. Проблема пролиферации пер165. вичных гоноцитов в эмбриогенезе (на примере сиговых рыб) // Тр. Межд. Форума по проблемам науки, техники и образования.– М., 2008 б. — Т. 3. — С. 58–60.
Селюков А.Г., Ефремова Е.В., Беспоместных Г.Н., Симонова А.В. Пролифе166. ративная активность герминативных стволовых клеток в эмбриогенезе сиговых рыб // Мат-лы 7 межд. научно-производств. совещ. по биологии и биотехн. разведения сиговых рыб. — Тюмень: Госрыбцентр, 2010 а. — С. 144–149.
Селюков А.Г., Ефремова Е.В., Бондаренко Г.Н. Цитоморфологические преоб167. разования первичных половых клеток в эмбриогенезе муксуна Coregonus muksun (Pallas) // Вестник ТюмГУ. — Медико-биологические науки. Науки о земле. Химия, 2010 б. — № 3. — С. 45–51.
Селюков А.Г., Шуман Л.А., Ефремова Е.В., Беспоместных Г.Н. Применение 168. УЗВ для формирования маточного стада сиговых рыб (на примере тугуна) // Мат-лы 7 межд. научно-производств. совещ. по биологии и биотехн. разведения сиговых рыб. — Тюмень: Госрыбцентр, 2010 в. — С. 250–254.
Селюков А.Г., Солодилов А.И., Елькин В.П. Слабые взаимодействия и рего169. меостаз живых систем (прикладной аспект). — Тюмень: ТюмГУ, 2008 а. — 192 с.
Селюков А.Г., Степанов А.М., Васильева Л.В. Состояние воспроизводитель170. ной системы сиговых рыб на этапе вылупления // Тез. докл. IV Всесоюзн. конф. по раннему онтогенезу рыб. — М., 1988. — С. 88–89.
Селюков А.Г., Чмилевский Д.А. Динамика распределения первичных поло171. вых клеток и особенности дифференцировки пола у пеляди // Тез. докл. VII Всесоюзн. совещ. эмбриологов. — Л., 1986. — С. 29.
Сендек Д.С. Филогенетический анализ сиговых рыб сем. Coregonidae методом бел172. кового электрофореза. Автореф. дисс. … канд. биол. наук. — С.Пб.: ГосНИОРХ, 2000. — 22 с.
92
Сергиенко Л.Л. Биологические основы совершенствования заводского вос173. производства сиговых рыб. Автореф. дисс. … канд. биол. наук. — С. Пб.: ГосНИОРХ, 1995. — 19 с.
Сергиенко Л.Л., Кугаевская Л.В. Нижний температурный порог начала пи174. тания личинок сиговых рыб // Тез. докл. IV Всес. совещ. по биол. и биотехнике развед. сиговых рыб. — Л., 1990. — С. 67–68.
Скрябин А.Г. Рыбы Баунтовских озер Забайкалья. — Новосибирск: Наука, 175. 1977. — 232 с.
Сочнев О.Я., Сочнева И.О., Хистяев А.А. Экологическая безопасность и мо176. ниторинг поисково-оценочных работ на газ в Обской и Тазовской губах // Газовая промышленность. — 2013. — № 2 (686). — С. 78–81.
Статова М.П., Томнатик Е.Н. Процесс анатомической и цитологической 177. дифференцировки пола у пеляди // Изв. АН Молд. ССР. Сер. биологич. и химич. наук, 1970. — № 1. — С. 36–39.
Таликина М.Г. О влиянии экстремальных температур на размерно-весо178. вые показатели и ранний гаметогенез плотвы Rutilus rutilus // Вопр. ихтиологии, 1996. — Т. 36. — № 4. — С. 502–506.
Таликина М.Г., Изюмов Ю.Г., Касьянов А.Н., Папченкова Г.А. Влияние ток179. сических веществ в период эмбриогенеза на выживаемость, линейно весовые показатели и формирование гонад сеголеток плотвы Rutilus rutilus // Вопр. ихтиологии. — 1999. — Т. 39. — № 3. — С. 401–409.
Таликина М.Г., Изюмов Ю.Г., Чеботарева Ю.В., Касьянов А.Н., Папченкова 180. Г.А. Анализ изменчивости морфологических показателей раннего гаметогенеза и мутагенного эффекта у молоди плотвы Rutilus rutilus после воздействия токсикантов на свободные эмбрионы // Вопр. ихтиологии. — 2000. — Т. 40. — № 6. — С. 816–825.
Таликина М.Г., Изюмов Ю.Г., Чеботарева Ю.В. Аберрантные митозы и гисто181. патология гонад у сеголеток плотвы Rutilus rutilus после токсических воздействий в эмбриональный и личиночный периоды развития // Вопр. ихтиологии, 2001а. Т. 41. – № 2. – С. 232–238.
Таликина М.Г., Изюмов Ю.Г., Чеботарева Ю.В. Реакция развивающейся мо182. лоди плотвы Rutilus rutilus и цитогенетические аномалии в зародышевых, половых и соматических клетках после обработки токсикантами зрелых спермиев // Вопр. ихтиологии, 2001б. – Т. 41. – № 6. – С. 835–841.
Таликина М.Г., Изюмов Ю.Г., Чеботарева Ю.В. Отдаленные генотоксические 183. ответы у сеголеток плотвы Rutilus rutilus после воздействий органических ядов на спермии родителей // Вопр. ихтиологии, 2003. — Т. 43. – № 3. — С. 411–417.
Таликина М.Г., Комов В.Т. Реакция молоди карпа 184. Cyprinus carpio и окуня Perca fluviatilis на длительное воздействие ртути // Вопр. ихтиологии, 2003. — Т. 43. — № 1. — С. 127.
Таликина М.Г., Комов В.Т., Чеботарева Ю.В., Гремячих В.А. Комплексная 185. оценка длительного воздействия ртути на молодь плотвы Rutilus rutilus в экспериментальных условиях // Вопр. ихтиологии, 2004. — Т. 44. — № 6. — С. 847–852.
Терских В.В., Васильев А.В., Воротеляк Е.А. Ниши стволовых клеток // 186. Изв. РАН. Сер. биологич., 2007а. – № 3. – С. 261–272.
Терских В.В., Васильев А.В., Воротеляк Е.А. Поляризация и асимметричное 187. деление стволовых клеток // Цитология, 2007б. — Т. 49. — № 11. — С. 933–938.
Терских В.В., Васильев А.В., Воротеляк Е.А. Асимметричное деление клеток 188. и неопластический рост // Изв. РАН. Сер. биологич., 2009. — № 4. — С. 389–394.
Турдаков А.Ф. Происхождение и миграция первичных половых клеток у 189. рыб // Изв. АН Кирг. ССР., 1969. – № 4. — С. 61–67.
Турдаков А.Ф. Воспроизводительная система самцов рыб. Фрунзе: Илым, 190. 1972. — 280 с.
93
Федорова Г.В. Перестройка рыбного населения Ладожского озера под воз191. действием загрязнения и антропогенного эвтрофирования // Вопр. ихтиологии, 1997. – Т. 37. – № 2. – C. 272–275.
Феклов Ю.А. Эколого-гистофизиологический анализ оогенеза пеляди // 192. Труды Биол. НИИ СПбГУ, 1997. – Вып. 44. – С. 39–48.
Черняев Ж.А. Эмбриональное развитие байкальского омуля. – М.: Наука, 193. 1968. – 91 с.
Черняев Ж.А. Особенности воздействия температурного и светового фак194. торов на эмбриональное развитие сиговых рыб Байкала // Тез. докл. II Всес. совещ. по биол. и биотехнике развед. сиговых рыб. – Петрозаводск, 1981. – С. 22–25.
Черняев Ж.А. Воспроизводство байкальского омуля. – М.: Легкая и пищ. 195. пром-ть, 1982. – 127 с.
Черняев Ж.А. Эколого-физиологические особенности эмбриогенеза бай196. кальского омуля и байкальского озерного сига // Морфология, структура популяций и проблемы рац. исп. лососевидных рыб. – Л., 1983. – С. 237–239.
Черняев Ж.A. Эколого-физиологические особенности размножения и раз197. вития сиговых рыб. Автореф. дис. …докт. биол. наук. – М.:ВНИРО, 1990. – 46 с.
Черняев Ж.A. Воздействие светового фактора на эмбриональное развитие 198. сиговых рыб // Изв. РАН. – Сер. биол., 1993. – С. 64–73.
Черняев Ж.А. Факторы и возможные механизмы, вызывающие изме199. нения темпов эмбрионального развития костистых рыб (на примере сиговых Coregonidae) // Вопр. ихтиологии, 2007. – Т. 47. – № 4. – С. 475–485.
Черняев Ж.А., Пичугин М.Ю. Особенности раннего онтогенеза весеннене200. рестующего баунтовского сига Coregonus lavaretus baunti // Вопр. ихтиологии, 1999. Т. 39. № 1. С. 78–88.
Чесалина ТЛ., Руднева И.И., Кузьминова Н.К. Токсическое действие соляра 201. на молодь черноморской кефали-остроноса Liza saliens // Вопр. ихтиологии, 2000. Т. 40. № 4. С. 304–306.
Чмилевский Д.А. Синтез ДНК в раннем оогенезе ерша // Цитология, 1970. – 202. Т. 12. № 5. С. 676–678.
Чмилевский Д.А. Синтез РНК и развитие ядрышкового аппарата в оогенезе 203. ерша // Цитология. – 1971. – Т. 13. – № 10. – С. 1233–1242.
Чмилевский Д.А. Влияние лучей Рентгена на оогенез тиляпии (204. Tilapia mossambica Peters). I. Облучение личинок в возрасте 6 сут // Радиация и проблемы размножения и роста рыб. – Л.: ЛГУ, 1978. – С. 21–37.
Чмилевский Д.А. Влияние экстремальных воздействий на оогенез рыб 205. (итоги и перспективы исследований) // Труды Биол. НИИ СПбГУ «Проблемы надежности функционирования воспроизводительной системы у рыб». – Л.: БиНИИ, 1997. – Вып. 44. – С. 49–64.
Чмилевский Д.А. Влияние повышенной температуры на оогенез мозам206. бикской тиляпии при ее воздействии на его различные периоды и фазы // Вопр. ихтиологии, 1998. – Т. 38. – № 5. – С. 676–683.
Чмилевский Д.А. Оогенез рыб в норме и при экстремальных воздействиях. 207. Автореф. дис. … докт. биол. наук. – СПб: СПбГУ, 2000. – 31 с.
Чмилевский Д.А. Репродуктивные показатели мозамбикской тиляпии 208. Oreochromis mossambicus (Cichlidae) при экстремальных воздействиях и их использование для прогнозирования воспроизводительных способностей популяций рыб // Вопр. ихтиологии, 2005. – Т. 45. – № 2. – С. 260–271.
Чмилевский Д.А., Иосифова Т.Е. Морфология и динамика числа половых 209. клеток в раннем онтогенезе мозамбикской тиляпии // Цитология, 1999. – Т. 41. – №2. – С. 135–139.
Чмилевский Д. А., Каменева Т. О. Оогенез мозамбикской тиляпии. I. Оогонии 210. и ооциты ранней профазы мейоза // Цитология, 2000. – Т. 42. – № 9. – С. 896–902.
94
Чмилевский Д. А., Каменева Т. О. Оогенез мозамбикской тиляпии. II. Син211. тез РНК и развитие ядрышкового аппарата // Цитология, 2001а. – Т. 43. – № 2 – .
С. 114–121.
Чмилевский Д. А., Каменева Т. О. Оогенез мозамбикской тиляпии. III. Мор212. фология цитоплазмы ооцитов периода превителлогенеза // Цитология, 2001б. –
Т. 43. – № 10. – С. 926–933.
Чмилевский Д.А., Лаврова Т.В. Влияние пониженной температуры на 213. оогенез тиляпии Oreochromis mossambicus (Peters) // Вопр. ихтиологии, 1990. –
Т. 30. –Вып. 1. – С. 76–84.
Чмилевский Д.А., Райкова Е.В. Включение Н214. 3-тимидина в ооциты ранней профазы мейоза стерляди // Цитология, 1976. – Т. 18. – № 6. – С. 689–692.
Шапошникова Г.Х. История расселения сигов рода 215. Coregonus // Зоогеография и систематика рыб. – Л.: ЗИН АН СССР, 1976. – С. 54–67.
Шатуновский М.И., Шилова С.А. Некоторые подходы к проблеме «техно216. генные катастрофы и биологические системы» // Успехи соврем. биологии, 1995. – Т. 115. – Вып. 5. – С. 517–525.
Экология рыб Обь-Иртышского бассейна /Под ред. Павлова Д.С., Моче217. ка А.Д. – М.: Т-во научн. изданий КМК, 2006. – 596 с.
Юхнева В.С. Эмбриональное развитие муксуна // Тр. Обь-Тазовск. отдел. 218. ВНИОРХ. Нов. сер., 1963. – Т. III. – С. 138–147.
Юхнева В.С. Наблюдения за нерестом и развитием икры сиговых рыб на 219. р. Сыня // Озерн. и пруд. х-во в Сибири и на Урале. – Тюмень, 1967. – С. 190–199.
Aizawa K., Yori K., Kaminaga C. et al. Responses of embryonic germ cells of the 220. radiation-sensitive medaka mutant to γ-irradiation // J. Radiat. Res., 2007. – V. 48. –
P. 121–128.
Arezo M.J., Alessandro S.D., Papa N. et al. Sex differentiation pottern in the annual 221. fish Austrolebias charrua (Cyprinodotiformes: Rivulidae) // Tissue and Cell, 2007. – V. 39. – P. 89–98.
Au D.W.T., Reunov A.A., Wu R.S.S. Reproductive impairment of sea urchin upon 222. chronic exposure to cadmium II. Effect on sperm development // Environ. Pollution, 2001. – V. 111. – P. 12–20.
Au D.W.T., Yurchenko O.V., Reunov A.A. Sublethal effect of phenol on 223. spermatogenesis in sea urchins (Anthocidaris crassipina) // Environ. Res., 2003. – V. 93. – P. 92–98.
Bourrachot S., Simon O., Gilbin R. The effect of waterborne uranium on the 224. hatching success, development and survival of early life stage of Zebrafish (Danio rerio) //Aquatic Toxicology, 2008. – V. 90. – P. 29–36.
Braat A.K, Zandbergen T., van de Water S. et al. Characterization of zebrafish 225. primordial germ cells: morphology and early distribution of vasa RNA // Devel. Dynamic, 1999. – V. 216. – P. 153–167.
Daley G.Q. Gametes from embryonic stem cells: a cup half empty or half full? // 226. Science, 2007. – V. 316. – P. 409–410.
Ding D., Lipshitz H.D. Localized RNAs and their functions // BioEssays, 1993. – 227. V. 15. – P. 651–658.
Doitsidou M., Reichman-Fried M., Stebler J., et al. Guidance of primordial germ 228. cell migration by the chemokine SDF-1 // Cell, 2002. – V. 111. – P. 647–659.
Donovan P.J. The germ cell — the mother of all stem cells // Int. J. Devel. Biol., 229. 1998. – V. 42. – P. 1043–1050.
Dosch R. Next generation mothers: maternal control of germline development 230. in zebrafish // Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology, January/February 2015. – V. 50. – No. – 1. P. 54–68.
Draper B.W., McCallum C.M., Moens C. B. nanos1 is required to maintain oocyte 231. production in adult zebrafish // Devel. Biol., 2007. – V. 305 (2). – P. 589–598.
95
Eddy E.M. «Germ plasm» and the differentiation of the germ cell line // Intern. 232. Rev. Cytol., 1975. – V. 43. – P. 333–362.
Eno C., Pelegri F. Gradual recruitment and selective clearing 233. generate germ plasm aggregates in the zebrafish embryo // BioArchitecture, 2013. – V 3. – № 4. – P. 125–132.
Epifano O., Dean J. Genetic control of early folliculogenesis in mice // Trends in 234. Endocrinology and Metabolism, 2002. – V.13. – P. 169–73.
Essenberg J.M. Sex differentiation in the viviparous Teleost 235. Xiphophorus helleri Heckel // Biol. Bull.Marine Biol.Lab., 1923. – V. 45. – P. 46–97.
Extavour C.G.M. Evolution of the bilaterian germ line: lineage origin and 236. modulation of specification mechanisms // Int. and Compar. Biol., 2007. – P. 1–16.
Ехtavour C.G.M., Akam M. Mechanisms of germ cell specification across the 237. metazoans: epigenesis and preformation // Development, 2003. – V. 130. – P. 5869–5884.
Foekema E.M., Deerenberg C. M., Murk A.J. Prolonged ELS test with the marine 238. flatfish sole (Solea solea) showns delayed toxic effects of previous exposure to PCD 126 // Aquatic Toxicology, 2008. – V. 90. – P. 197–203.
Fujimoto T., Kataoka T., Sakao S. et al. Developmental stages and germ cell lineage 239. of the loach (Misgurnus anguillicaudatus) // Zool. Sci., 2006. – V. 23. – P. 977–989.
Gao Z.,Wang H., Rapp D. et al. Gonadal sex differentiation in the bluegill sunfish 240. Lepomis macrochirus and its relation to fish size and age // Aquaculture, 2009. – V. 294. – P. 138–146.
Ginsburg V., Snow M. H., McLaren A. Primordial germ cells in the mouse embryo 241. during gastrulation // Development, 1990. – V. 110. – P. 521—528.
Gomperts M., Garsia-Castro M., Wylie C., Heasman J. Interactions between 242. primordial germ cells play a role in their migration in mouse embryos // Development, 1994. – V. 120. – P. 135–141.
Grandi G., Cicca M. Histological and ultrastructural investigation of early 243. gonad development and sex differentiation in adriatic sturgeon (Acipenser naccarii, Acipenseriformes, Chondrostei) // J. Morphology, 2008. – V. 269. – P. 1238–1262.
Hamaguchi S. A light and electron-microscopic study on the migration of 244. primordial germ cells in the teleost, Oryzias latipes // Cell Tiss. Res., 1982. – V. 227. –
P. 139–151.
Hamaguchi S. The structure of the germinal dense bodies (nuages) during 245. differentiation of the male germ line of the teleost, Oryzias latipes // Cell Tissue Res., 1987. – V. 248. – P. 375–380.
Herpin A., Rohr S., Riedel D. et al. Specification of primordial germ cells in 246. medaka (Oryzias latipes) // BMC Develop. Biol., 2007. – V. 7. – N 3. P. 1–10. (http://www. biomedcentral.com/1471–213X/7/3).
Hogan B. Primordial germ cells as stem cells // Stem cell biology / Eds. Marshak D.R. 247. et al. N.Y.: Cold Spring Harbor Lab. Press, 2001. – P. 189–204.
Houston D.W., King M.L. Germ plasm and molecular determinants of germ cell 248. fate // Curr. Top. Devel. Biol., 2000. – V. 50. – P. 155–181.
Hubner K., Fuhrman G., Christenson L. et al. Derivation of oocytes from mouse 249. embryonic stem cells // Science, 2003. – V. 300. – P. 1251–1256.
Ikenishi K. Germ plasm in 250. Caenorabditis elegans, Drosophila and Xenopus // Devel. Growth and Differ., 1998. – V. 40. – №1 – P. 1–10.
Ijiri K.I., Egami N. Mitotic activity of germ cells during normal development of 251. Xenopus laevis tadpoles // J.Embryol. Exp. Morphol., 1975. – V. 34. – № 3. – P. 687–694.
Kerkis A. Fonseca S.A.S., Serafim R.C. et al. In vitro differentiation of male mouse 252. embryonic stem cells into both presumptive stem cells and oocytes // Cloning Stem Cells, 2007. – V. 9. – № 4. – P. 535–548.
Kloc M., Bilinski S., Chan A.P., Etkin L.D. Mitochondrial ribosomal RNA in the germinal 253. granules in Xenopus embryos revisited // Differentiation, 2000. – V. 67. – P. 80–83.
96
Knaut H., Werz C, Geisler R. A zebrafish homologue of the chemokine receptor 254. Cxcr4 is a germ-cell guidance receptor // Nature, 2003. – V. 421. – P. 279–282.
Knaut H., Schier A.F. Clearing the path for germ cells // Cell, 2008. – V. 132. –
255. P. 337–339.
Koya Y., Fujita A., Niki F. et al. Sex differentiation and pubertal development 256. of gonad s in the viviparus mosquitofish, Gambusia affinis // Zool. Sci., 2003. – V.20. –
P. 1231–1242.
Kurokawa H., Aoki Y., Nakamura S. et al. Time-lapse analysis reveals different 257. modes of primordial germ cell migration in the medaka Oryzias latipes // Develop. Growth. Differ., 2006. – V. 48. – P. 209–221.
Kurokawa H., Saito D., Nakamura S. et al. Germ cells are essential for sexual 258. dimorphism in the medaka gonad // Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 2007. – V. 104. – № 43. –
P. 16958–16963.
Leatherman J.L., Jongens T.A. Transcriptional silencing and translational control: 259. key features of early germline development // BioEssays, 2003. – V. 25. – P. 326–335.
Lebrun C., Billard R., Jalabert B. Changes in the number of germ cells in the gonade 260. of the rainbow trout (Salmo gairdneri) during the first 10 post-hatching weeks // Reprod. Nutr. Devel., 1982. – V. 22. – № 2. – P. 405–412.
Lewis Z.R., McClellan M.C., Postlethwait J.H. et al. Female-specific increase in 261. primordial germ cells marks sex differentiation in threespine stickleback (Gasterosteus aculeatus) // J. Morphol., 2008. – V. 269. – № 8. – P. 909–921.
Li W., Deng F., Wang H. et al. Germ cell-less expression in zebrafish embryos // 262. Develop., Growth and Differ., 2006. – V. 48. – № 25. – P. 333–338.
Lin H., Cell biology of stem cells: an enigma of asymmetry and self-renewal // 263. J. Cell Biol., 2008. – V. 180. – No. 2. – P. 257–260.
Makkapan W., Yoshizaki G., Tashiro M., Chotigeat W. Expression profile 264. of ribosomal protein L10a throughout gonadal development in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) // Fish Physiol. and Biochem., 2014, DOI 10.1007/s10695-013-9906-3.
Matova N., Cooley L. Comparative aspects of animal oogenesis // Devel. Biol., 265. 2001. – V. 16. – P. 1–30.
McIntosch S., King T., Wu D., Honson P.V. Toxicity of dispersed weathered crude 266. oil to early life stages of Atlantic herring (Clupea harengus) // Environ. Toxicol. and Chem., 2010. – V. 29. – № 5. – P. 1160–1167.
Meijide F.J., Lo Nosro F.L., Guerrero G.A. Gonadal development and sex 267. differentiation in the cichlid fish Cichlasoma dimerus (Teleostei, Perciformes): A light- and electron- microscopic study // J. Morphol., 2005. – V. 264. – P. 191–210.
Miyake A., Saito T., Kashiwagi T. et al. Cloning and pattern of expression of the 268. shiro-uo vasa gene during embryogenesis and its roles in PGC development // Int. J. Devel. Biol., 2006. – V. 50. – № 7. – P. 619–625.
Mochizuki K., Nishimiya-Fujisawa C., Fujisawa T. Universal occurrence of the 269. vasa-related genes among metazoans and their germline expression in Hydra // Devel. Genes Evol., 2001. V. 211. P. 299–308.
Moore G.A. The germ cells of the trout (270. Salmo irideus Gibbons) // Tr. Amer. Micr. Soc., 1937. – V. 56. – № 1. – P. 105–112.
Nagai T., Yamaha E., Arai K. Histological differentiation of primordial germ cells 271. in zebrafish // Zool. Sci., 2001. – V. 18. – P. 215–223.
Nakamura M. Effects of estradiol-17β on gonadal sex differentiation in two 272. species of salmonids, the masu salmon, Oncorhynchus masou, and the chum salmon, O. keta // Aquaculture, 1984. – V. 43. – N 1-3. – P. 83–90.
Nguyen L.T.H., Janssen C.R., Volckaert F.A.M. Susceptibility of embryonic and 273. larval African catfish (Clarias gariepinus) to toxicant. Bull. Environ. Contam. Toxicol., 1999. – V. 62. – P. 230–237.
97
Otani S., Maegawa S., Inoue K. The germ cell lineage identified by 274. vas-mRNA during the embryogenesis in goldfish // Zool. Sci., 2002. – V. 19. – P. 519–526.
Parazzolo L, Coward K., Davail B. et al. Expression and localization of messemger 275. ribonucleics acid for the vitellogonin receptor in ovarian follicles throughout oogenesis in rainbow trout Oncorhynchus mykiss // Biol. Reprod., 1999. – V. 60. – P. 1057—1068.
Raz E. The function and regulation of vasa-like genes in germ cell development // 276. Genome Biol., 2000. – V. 3. – P. 1017.1–1017.6.
Reunov A.A., Isaeva V.V., Au D.W.T., Wu R.S.S. Nuage constituents arising from 277. mitochondria: is it possible? // Devel., Growth and Differ., 2000. – V. 42. – P. 139–143.
Roubinet C., Cabernard C. Control of asymmetric cell division // Curr. Opin.Cell 278. Biol., 2014. – V. 31. – P. 84–91.
Saffman E, Lasko P. Germline development in vertebrates and invertebrates // 279. Cell Mol. Life Sci., 1999. – V. 55. – P. 1141–1163.
Saito D., Morinaga C., Aoki Y. et al. Proliferation of germ cells during gonadal 280. sex differentiation in medaka: insights from germ cell-depleted mutant zenzai // Develop. Biol., 2007. – V. 310. – P. 280–290.
Saito T., Goto-Kazeto R., Kawakami Y., et al., The mechanism for primordial germ-281. cell migration if concerved between Japanese eal and zebrafish // PLoS ONE, 2011. – V. 6 (9). – 8 p.
Satoh N, Egami N. Sex differentiation of germ cells in the teleost, 282. Oryzias latipes, during normal embryonic development // J. Embryol. Exp. Morphol., 1972. – V. 28. – № 2. – P. 385–395.
Selyukov A.G., Efremova E.V., Bespomestnykh G.N. Primordial germ cells 283. proliferation in coregonid embryos // Abstr. X Intern. Symposium on Biology and Manager of Coregonid Fishes. – Canada, Winnipeg. – 2008. – P. 58.
Seydoux G., Braun R.E. Pathway to totipotency: lessons from germ cells // Cell, 284. 2006. – V. 127. – P. 891–904.
Shi X., Zhou B. The role of Nrf2 and MAPK pathways in PFOS-induced oxidative 285. stress in zebrafish embryos // Toxicol. Sci., 2010. – V. 115. – №2. – P. 391–400.
Shinomiya A., Tanaka M., Kobayashi T. et al. The vasa-like gene, olvas, identifies 286. the migration path of primordial germ cells during embryonic body formation stage in the medaka, Oryzias latipes // Devel., Growth and Differ., 2000. – V. 42. – P. 317–326.
Shukalyuk A., Isaeva V., Kizilova E., Baiborodin S. Stem cells in reproductive 287. strategy of colonial rhizocephalan crustaceans (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala) // Invertebrate Reprod. Devel., 2005. – V. 48. – P. 41–53.
Smith A. A glossary for stem-cell biology // Insight Nature, 2006. – V. 441. – P. 1060.288.
Solana J. Closing the Circle of Germline and Stem Cells: the Primordial Stem Cell 289. Hypothesis // Evodevo, 2013. – V. 4(1). – P. 2. doi: 10.1186/2041–9139-4-2.
Stoner D.S., Rinkevich B., Weissman I.L. Heritable germ and somatic cell lineage 290. competitions in chimeric colonial protochordates // Ibid. 1999. – V. 96. –P. 9148–9153.
Strüssmann C., Nakamura M. Morphology, endocrinology and environmental 291. modulation of sex differentiation in teleost fish // Fish Phisiol. and Biochemist., 2002. – V. 26. – P. 13–29.
Sunanaga T, Saito Y, Kawamura K. Postembryonic epigenesis of Vasa-positive 292. germ cells from aggregated hemoblasts in the colonial ascidian, Botryllus primigenus // Devel., Growth and Differ., 2006. – V. 48. – P. 87–100.
Takashima F., Patino R., Nomura H. Histological studies on the sex differentiation 293. in rainbow trout // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish., 1980. – V.46. – № 1. – P. 1317–1322.
Tanaka M., Saito D., Moringa Ch. et al. Cross talk between germ cells and gonadal 294. somatic cells is critical for sex differentiation of the gonads in the teleost fish, medaka (Oryzias latipes) // Devel., Growth and Differ., 2008. – V. 50. – № 4. – P. 273–278.
Theusch E.V., Brown K.J., Pelegri F. Separate pathways of RNA recruitment lead to the 295. compartmentalization of the zebrafish germ plasm // Devel. Biol., 2006. – V. 292. – P. 129–141.
98
Timmermans L.P.M., Taverne N. Segregation of primordial germ cells: their 296. numbers and fate during early development of Barbus conchonius (Cyprinidae, Teleostei) as indicated by 3H-thymidine incorporation // J. Morphol., 1989. – V. 202. – P. 225–237.
Tran V., Lim C., Xie J., Chen X. Asymmetric division of drosophila male germline 297. stem cell shows asymmetric histone distribution // Science, 2012. – V. 338. – P. 679–682.
Tsunekawa N., Naito M., Sakai Y. et al. Isolation of chicken vasa homolog 298. gene and tracing the origin of primordial germ cells // Development, 2000. – V. 127. – P. 2741– 2750.
Villegas J., Araya P., Bustos-Obregon E., Bursio L.O. Localization of the 16S 299. mitochondrial rRNA in the nucleus of mammalian spermatogenic cells // Mol. Hum. Reprod., 2002. – V. 8. – P. 977–983.
Vizziano D., Randuineau G., Baron D. et al. Characterization of early molecular 300. sex differentiation in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss // Devel. Dyn., 2007. – V. 236. – № 8. – P. 2198–2206.
Watanabe M., Itoh K., Abe K. et al. Immuno-localization of DEAD family proteins 301. in germ cell line cells of Xenopus embryos // Devel., Growth and Differ., 1992. – V. 34. – P. 223–231.
Weissman I.L. Stem cells: units of development, units of regeneraton and units in 302. evolution // Cell, 2000. – V. 100. – P. 157–168.
Wiszniak S.E., Dredge B.K., Jensen K.B. HuB (elavl2) mRNA is restricted to 303. the germ cells by post-transcriptional mechanisms including stabilisation of the message by DAZL // PLoS One, 2011. – V. 6. P. 20773. Published online 2011 Jun 13.
Wylie C.C. Germ cells // Cell, 1999. – V. 96. – P. 165–174.304.
Yaron L., Cocos N., Salzer H. Effect of temperature and fotoperiod on ovarian 305. recrudescence in the cyprinid fish Mirogrex terra-sanctae // J.Fish Biol., 1980. – N 4. –
P. 371–382.
Yoon C., Kawakami K., Hopkins N. Zebrafish vasa homologue RNA is localized 306. to the cleavage planes of 2- and 4-cell-stage embryos and is expressed in the primordial germ cells // Development, 1997. – V. 124. – P. 3157–3165.
Yoshikawa H., Oguri M. Sex differentiation in a cichlid, 307. Tilapia zillii // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish., 1978. – V. 44. – № 4. – P. 313–318.
Yuan Y., Li M. Hong Y. Light and electron microscopic analyses of Vasa expression 308. in adult germ cells of the fish medaka // Gene, 2014. V. 545(1). P. 15–22.
Zwaka T.P., Thomson J.A. A germ cell origin of embryonic stem cells? // 309. Development. – 2005. – V. 132. – P. 227–233.